一、rna跑胶用多少μ?
跑胶的时候,用4ul RNA溶液+2 ul loading buffer。
保证RNA的浓度在150-300ng/ul,这时所得到的条带会 比较清晰。
总 RNA 的电泳检测,原来我使用 Lambda DNA/EcoR I (或者 Hind III)酶切 Marker,现在基本上不再用 Marker 了。指示剂一定是溴酚蓝加二甲苯氰,胶浓度 1-1.2%。加样后,开始电泳 (电压的选择的唯一依据是,我后面的时间安排。)。
二、rna跑胶方法?
RNA电泳可以在变性及非变性两种条件下进行。非变性电泳使用1.0%--1.4%的凝胶,不同的RNA条带也能分开,但无法判断其分子量。只有在完全变性的条件下,RNA的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。因此要测定RNA分子量时,一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时,配制普通的1%琼脂糖凝胶即可。
三、rna跑胶步骤?
RNA电泳可以在变性及非变性两种条件下进行。非变性电泳使用1.0%--1.4%的凝胶,不同的RNA条带也能分开,但无法判断其分子量。只有在完全变性的条件下,RNA的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。因此要测定RNA分子量时,一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时,配制普通的1%琼脂糖凝胶即可。
四、rna跑胶检测方法?
RNA电泳可以在变性及非变性两种条件下进行。非变性电泳使用1.0%--1.4%的凝胶,不同的RNA条带也能分开,但无法判断其分子量。只有在完全变性的条件下,RNA的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。因此要测定RNA分子量时,一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时,配制普通的1%琼脂糖凝胶即可。
五、rna跑胶用什么缓冲液?
我们这边RNA电泳用的是的Mops缓冲剂,也就是3-(N吗啡啉)丙磺酸,属于生物缓冲剂,经常用于配置RNA电泳缓冲液。我们这边一直用新德晟的,一直很稳定。当然不同的试验用哪一种你需要去咨询一下
六、rna跑胶要注意什么?
RNA电泳可以在变性及非变性两种条件下进行。非变性电泳使用1.0%--1.4%的凝胶,不同的RNA条带也能分开,但无法判断其分子量。只有在完全变性的条件下,RNA的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。
注意一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时,配制普通的1%琼脂 糖凝胶即可。
七、rna跑胶标准条带大小?
提取的总RNA跑胶从大到小有带3条。三条是主带。 哺乳动物的RNA包括mRNA,rRNA,tRNA和du小RNA,根据分子量和沉降系数的不同,rRNA又可分为28s, 18s 和5.8s 的rRNA。
从RNA的含量上看,rRNA是几种RNA中最多的,高达90%以上,而mRNA很少。只有1-2%,而其他两种RNA的分子量比较小,这就解释了为什么从凝胶电泳的结果上只能看到三条带。
而这三条带的完整性,就代表了mRNA的完整性。
八、RNA跑胶后再EB染色行吗?
是变性电泳还是非变性电泳?非变性电泳一般是把溴乙锭加到凝胶内,如果是变性胶可以按照下面的方法进行染色。
1.电泳结束后,将凝胶在DEPC处理水中浸泡15分钟,除去凝胶中的甲醛。
2.使用DEPC处理水制备的EtBr(5 mg/ml)染色2~3分钟。用DEPC处理水脱色30分钟,再换水脱色30分钟后成像观察。如果背景偏高时可以进一步进行过夜凝胶脱色。注意:甲醛凝胶用EtBr染色比较麻烦,即使RNA样品染上了明显的条带也会带来较高的背景。因此,应控制凝胶在染色剂中的浸泡时间小于5分钟,以降低背景。
九、rna跑胶要加多少量?
具体看你rna的浓度是多少,一般情况下100ng的RnA足够跑胶。
十、6%分离胶用多大的电压?
一般浓缩胶为80V,这样可以达到较好的浓缩效果,当条带达到分离胶时,可以调到220V,这样时间快点,做Wb时蛋白降解较少。
转膜时一般为100V,转膜时间要根据蛋白大小确定,130kD蛋白分子较大,最好时间长点,不过太长也不好,蛋白转透过膜的,大约要1个半小时吧。